蟯虫の特徴・実験への影響

蟯虫の形態

↑テープ法で検出されたS.muris虫卵 ←雌成虫(A〜C)・虫卵(D〜F) 　(1)頚翼　(2)陰門(産卵孔)　(3)虫卵(子宮) 　　A, D:　ネズミ盲腸蟯虫(Syphacia obvelata) 　　B, E:　Syphacia muris 　　C, F:　ネズミ大腸蟯虫(Aspiculuris tetraptera)

　糞便検査での虫卵観察時には、光学顕微鏡と接眼ミクロメーターが必須。虫卵の鑑別のために必ず大きさを測定すること。

蟯虫の特徴

	ネズミ盲腸蟯虫 (Syphacia obvelata) "ｼﾌｧｷｱ・ｵﾍﾞﾗｰﾀ"	Syphacia muris "ｼﾌｧｷｱ・ﾑﾘｽ"	ネズミ大腸蟯虫 (Aspiculuris tetraptera) "ｱｽﾋﾟｸﾙﾘｽ・ﾃﾄﾗﾌﾟﾃﾗ"
寄生 部位	マウスの盲腸	ラットの盲腸	マウスの結腸起始部
体長	♂1〜2mm　♀3〜6mm	♂約1mm　♀3〜4mm	♂2〜2.6mm　♀2.6〜4.7mm
形態	頭部膨大部なし、頸翼なし、尾部細長く尖る。陰門は体の前端から約1/6〜1/7の位置。	頭部膨大部なし、頸翼なし、尾部細長く尖る。陰門は体の前端から約1/4の位置。	頭部膨大部あり、頸翼あり、尾部はSyphacia属ほど尖らない。陰門は体の前端から約1/3の位置。
虫卵	120〜140×30〜50mm 細長く左右非対称で、「柿の種」様。	72〜82×26〜36mm 「柿の種」様だが、左右非対称はS. obvelataほど顕著でない。	83〜93×38〜43mm 紡錘形で、非対称性は不明確。

　蟯虫は一般に宿主特異性が高い。ヒトの蟯虫はEnterobius vermicularis (エンテロビウス・ヴェルミクラリス)であり、マウス・ラットの蟯虫とは異なるので、実験者や飼育担当者自身の蟯虫駆除はマウス・ラットには無関係である。（むろんヒトの蟯虫駆除はした方がよい。）

蟯虫の生活環と日周活動リズム

	ネズミ盲腸蟯虫 (Syphacia obvelata)	Syphacia muris	ネズミ大腸蟯虫 (Aspiculuris tetraptera)
生活環	感染後11日目に♀成虫は肛門へ移動し、肛門周囲に産卵後死亡。産卵後5〜20時間で虫卵は感染可能。	感染後7〜8日目に♀成虫は肛門へ移動し、肛門周囲に産卵後死亡。産卵後5〜20時間で虫卵は感染可能.	感染後23日目から♀成虫は腸管内で断続的に産卵。寿命は45〜50日。産卵後6日で虫卵は感染可能。
日周リズム(*)	産卵は午後の早い時間に多い。	産卵は午後の早い時間に多い。	産卵は夕方〜早朝。

　*) 通常の12または14時間照明条件下。

蟯虫の感染状況

　最近の国内のマウス・ラットの蟯虫感染状況については数は少ないが、下記の報告がある。外国の感染例が多く報告されているので「外国のほうが汚ない」と単純に思う人もいるが、国内の状況を調べてから比べなくてはいけない。蟯虫を定期検査の対象にしておらず、感染に気付いていないケースもかなりあるだろう、という印象を持っている。

• 高倉 (2000)（アニテックス, 12(4): 157-161）は、全国の動物実験施設の汚染微生物の推移を示し、Syphacia spp.は'80年代よりも汚染率は低下しているものの、'90年代（1992〜1996年）でも約5%のマウス・ラットから検出され、特に大学・研究所のラットでは約35%が汚染されている。
• 岡島 他 (2000)（アニテックス, 12(4): 162-167）は、最近10年間（1990〜1999年）に検査依頼を受けたマウスの0〜10%、およびラットの0〜22%に蟯虫感染があったと述べている。なお、この論文の図3（ラットにおける汚染率）の中で「ネズミ盲腸蟯虫」とあるのは「Syphacia muris」あるいは「Syphacia spp.」の誤りであろう。
• 野津 (2000)（第6回実験動物技術者フォーラム講演要旨集, p.3）は、実験動物中央研究所で1996〜1998年にかけて検査依頼を受けた全国の動物実験施設のマウスの消化管内寄生虫について、444施設中116施設（26.1%）から消化管内寄生虫が検出され、Syphacia obvelataは3.2%、Aspiculuris tetrapteraは1.6%の施設からのマウスに認められたとしている。ただし、飼育環境毎（バリア、コンベンショナル等）の検出状況の違いについては不明。

実験への影響

• A. tetrapteraに対するマウスの自然抵抗性は、他種の線虫 (S. obvelata) との同時感染により有意に上昇する（Stahl (1966): Exp. Parasitol., 18: 116-123）。
• 蟯虫感染はアジュバント誘発性関節炎の発生を減少させる（Pearson & Taylor (1975): Immunology, 29: 391-396） 。
• S. obvelata感染は脾臓とリンパ節のT-およびB-リンパ球の増殖と、しばしば胚中心形成を誘発する（Beattie 他 (1981): Cancer Res., 41: 2322-2327） 。
• 蟯虫感染無胸腺マウスではリンパ球増殖異常が進行し、リンパ腫に至る（Beattie 他 (1980): Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 77: 4971-4974; Baird 他 (1982): Cancer Res., 42: 198-206）。
• ラットでは、蟯虫感染によって腸管内の水と電解質の移動が明らかに減少する（Luebcke 他 (1992): Dig. Dis. Sci., 37: 60-64） 。
• 蟯虫感染は非寄生虫性抗原刺激に対する液性免疫を変化させる（Sato 他 (1995): J. Parasitol., 81: 559-562）。
• 蟯虫感染動物は、成長の研究に適さない（Wagner (1988): Lab. Anim. Sci., 38: 476-478）。
• マウスでのS. obvelata感染は、行動の研究において明らかな活動低下を引き起こす（McNair and Timmons (1977): Lab. Anim. Sci., 27: 38-42）。

　このように実験への影響は以前から報告されている。
　ICLASモニタリングセンターでは、病原体のランクのカテゴリーE（通常は病原性なく、飼育環境の微生物統御の判断する指標に有用な微生物）に分類している。来年度の見直し案では「ぎょう虫」としてカテゴリーCとEを並記しているが、蟯虫のうちどの種がCで、どれがEなのかは不明である（高倉 (2000): アニテックス, 12(4): 157-161）。
　一方、『大学動物実験施設の実験動物の微生物モニタリングの指針』ではカテゴリーＣ（動物を致死させる力は無いが、発病の可能性があり発病しなくても生理機能を変化させる恐れがある病原体）か、カテゴリーD（通常は発病しないが、実験処理いかんでは病気を誘発させる恐れがある病原体）とされている。私はカテゴリーＣかDが妥当と考える。
　なお、前述のカテゴリーの一覧表では細菌は二名法で記されているのに比べ、寄生虫は総称として揚げられており、相変わらず個々の寄生虫種についての認識が低いと思われるのが残念である。